Biološki mikroskop na volumenu tkivnog bloka
Biološki mikroskop sa kondenzatorom može pomerati kondenzator gore-dole da bi njegov sjaj bio umeren, a takođe može promeniti otvor promenljivog svetlosnog analizatora da bi postigao umerenu svetlost od 9b. Ako je svjetlost na suncu, kondenzator se može podići na odgovarajući način, a otvor promjenjivog optičkog šuma može se na odgovarajući način povećati. Ako je svjetlo prejako, kondenzator se može spustiti na odgovarajući način, a otvor raskrsnice se može na odgovarajući način smanjiti. Ako se i dalje osjećate blistavo u ovom slučaju, možete odabrati odgovarajući filter i postaviti ga na držač ispod kondenzatora. Ova tussa može dobiti sjaj koji vas zadovoljava. Naravno, potrebno je steći iskustvo nakon određenog perioda prakse u podešavanju gornjeg i donjeg položaja kondenzatora za promjenu veličine otvora optičkog očitavanja i odabir odgovarajućih filtera.
Vrlo važan problem biomikroskopa je da se sadržajem 65 elemenata u svakom dijelu nakon sušenja zamrzavanjem i ugradnje smole (FD) i sušenja zamrzavanjem mora pažljivo rukovati, kako se ne bi oštetile ćelije koje se posmatraju i analiziraju. Budući da rendgenska mikroanaliza ne uključuje samo mnogo koraka, već i mnogo košta, vrlo je žalosno donijeti pogrešan zaključak ako su analizirane ćelije oštećene ćelije ili mrtve stanice nakon dugotrajnog tretmana u više koraka. Na primjer, ćelije miokarda odvojene tretmanom kolagenazom imaju dva oblika, jedan je dugačak štapić, a drugi je okrugao. Potonja je umiruća ćelija koja je oštećena tokom odvajanja ćelija.
Sadržaj i distribucija elektrolita u ove dvije vrste ćelija su veoma različiti pod biološkim mikroskopom. Na je vrlo visok i K je vrlo nizak u okruglim ćelijama miokarda, a koncentracija ca u linearnim dendritima je vrlo visoka. U poređenju sa drugim analitičkim metodama, dokazano je da su visoki Na i nizak K u kružnim ćelijama i visoki ca u mitohondrijama rezultat oštećenja ćelijske membrane tokom separacije ćelija. Metoda hladne fiksacije ćelija i tkiva je često njihovo fiksiranje prvo gašenjem, a zatim pohranjivanje u tečnom dušiku. Fiksacija gašenja je veoma važna za efekat očuvanja. Žive ćelije ili svježa tkiva su bogata vodom. Prilikom gašenja često se delovi ćelija ili tkiva koji su u direktnom kontaktu sa krioprotektantima (posebno kada se gašenje tečnim azotom) prvo zamrznu i fiksiraju, formirajući tako „ljusku“, koja otežava zamrzavanje i fiksiranje centralnog deo ćelija. Stoga se pri rendgenskoj mikroanalizi često nađe da se u centru većih ćelija nalaze kristali leda. Kako bi se to spriječilo, kao rashladno sredstvo koristi se supstanca sa tačkom topljenja višom od tečnog dušika, ali temperaturom sušenja nižom od 806c. Postoji mnogo takvih supstanci, ali najlakše dostupna je koncentrovani propan (tačka ključanja-42．120c, tačka topljenja-187．10c, molekulska težina-44.1), koji ima najveća brzina hlađenja. Ali njegov nedostatak je zapaljivost.
Biološki mikroskop može staviti mišićno vlakno na poseban okvir, a kada se mišićno vlakno skupi u određenu fazu i treba ga fiksirati, mlaznica se odmah pokreće, tako da se tekući propan raspršuje na mišićno vlakno da se ugasi i učvrsti. to. Zatim se mišićna vlakna vade zajedno sa rešetkom i stavljaju u tečni azot. Ako su krvne ćelije ili odvojene ćelije fiksirane, prvo centrifugirajte malom brzinom da biste koncentrirali ćelije, prebacite ćelije u srebrnu malu epruvetu sa dobrom toplotnom provodljivošću i stavite malu epruvetu u tečni propan radi zamrzavanja i fiksiranja. Prilikom fiksiranja pankreasa pacova u Hall laboratoriji, dva čelična bloka su prethodno ohlađena tečnim helijumom (ili tečnim azotom), a dva bakrena bloka su postavljena ispred i iza pankreasa kliještima, tako da su tetke ugašene i fiksirane. Tkivo ili ćelije mogu se čuvati dugo vremena nakon što su gašene i fiksirane i prebačene u tečni dušik.
